Секретоутворююча функція молочної залози корів залежно від тривалості сухостійного періоду

  • A. A. Zamaziy Полтавська державна аграрна академія, Полтава
  • M. D. Кambur Сумський національний аграрний університет, Суми
  • A. Y. Lermontov Полтавська державна аграрна академія, Полтава
Ключові слова: корови, секретоутворююча функція, молочна залоза, сухостій.

Анотація

Встановлено, що тривалість сухостійного періоду корів впливає на секретоутворюючу функцію тканин молочної залози в новотільний період, депонування енергії в організмі, ріст і розвиток плода та склад молока. Скорочення сухостійного періоду супроводжується збереженням високої активності тканин молочної залози корів, що негативно відбилося на масі тіла корів і новонароджених телят. Отримані дані щодо секретоутворюючої функції тканин молочної залози корів залежно від тривалості сухостійного періоду свідчать про негативний вплив даного фактора на продуктивність тварин. Використання неетирифікованих жирних кислот уповільнювалося до закінчення періоду лактації, однак артеріовенозна різниця знижувалася в 1,58 раза порівняно з початком періоду завершення лактації і була в 1,18 раза більша, ніж у корів контрольної групи. У корів ІІІ дослідної групи тривалість сухостійного періоду становила 45–49 діб. Адсорбуюча активність молочної залози в період завершення лактації відповідала показникам шостого–сьомого місяця лактації. Визначено інтенсивне використання тканинами молочної залози корів летких жирних кислот, оцтової та β-оксимасляної кислот, відповідно, в 1,28; 1,32 та 1,44 раза більше, ніж у тварин контрольної групи. Метаболіти ліпідного обміну в цей період інтенсивніше поглиналися молочною залозою корів ІІІ дослідної групи, що негативно вплинуло на масу їх тіла і новонароджених телят, а саме: в 1,16–1,24 раза менше, порівняно з показниками тварин контрольної групи.

Посилання

Amos, M. R., Healey, G. D., Goldstone, R. J., Mahan, S. M., Düvel, A., Schuberth, H.-J., Sandra, О., Zieger, P., Dieuzy-Labaye, I., Smith, G. E., & Sheldon, I. M. (2014). Differential endometrial cell sensitivity to a cholesterol-dependent cytolysin links trueperella pyogenes to uterine disease in cattle1. Biology of Reproduction, 90(3), 1–13.

Cheong, S. H., Filho, O. G. S., Absalón-Medina, V. A., Pelton, S. H., Butler, W. R., & Gilbert, R. O. (2016). Metabolic and endocrine differences between dairy cows that do or do not ovulate first postpartum dominant follicles1. Biology of Reproduction, 94(1), 1–11.

DePeters, E. J., German, J. B., Taylor, S. J., Essex, S. T., & Perez-Monti, H. (2001). Fatty acid and triglyceride composition of milk fat from lactating holstein cows in response to supplemental canola oil. Journal of Dairy Science, 84(4), 929–936.

Górová, R., Pavlíková, E., Blaško, J., Meľuchová, B., Kubinec, R., Margetín, M., & Soják, L. (2011). Temporal variations in fatty acid composition of individual ewes during first colostrum day. Small Ruminant Research, 95(2–3), 104–112.

Kambur, M. D., Zamasiy, A. A., & Fedoruk, R. S. (2009). Physiology of lactation and digestion. Kozatsky Val, Sumy (in Ukrainian).

Machado, V. S., Oikonomou, G., Bicalho, M. L. S., Knauer, W. A., Gilbert, R., & Bicalho, R. C. (2012). Investigation of postpartum dairy cows’ uterine microbial diversity using metagenomic pyrosequencing of the 16S rRNA gene. Veterinary Microbiology, 159(3–4), 460–469.

Marey, M. A., Yousef, M. S., Kowsar, R., Hambruch, N., Shimizu, T., Pfarrer, C., & Miyamoto, A. (2016). Local immune system in oviduct physiology and pathophysiology: attack or tolerance? Domestic Animal Endocrinology, 56, 204–211.

Mayasari, N., Rijks, W., de Vries Reilingh, G., Remmelink, G. J., Ducro, B., Kemp, B., Parmentier, H. K., & Van Knegsel, A. T. M. (2016). The effects of dry period length and dietary energy source on natural antibody titers and mammary health in dairy cows. Preventive Veterinary Medicine, 127, 1–9.

Miettinen, H., & Huhtanen, P. (1996). Effects of the Ratio of Ruminal Propionate to Butyrate on Milk Yield and Blood Metabolites in Dairy Cows. Journal of Dairy Science, 79(5), 851–861.

Ouattara, B., Bissonnette, N., Duplessis, M., & Girard, C. L. (2016). Supplements of vitamins B9 and B12 affect hepatic and mammary gland gene expression profiles in lactating dairy cows. BMC Genomics, 17(1), 1–20.

Sheldon, I. M., Cronin, J., Goetze, L., Donofrio, G., & Schuberth, H.-J. (2009). Defining postpar-tum uterine disease and the mechanisms of i nfection and immunity in the female reproductive tract in cattle1. Biology of Reproduction, 81(6), 1025–1032.

Sheldon, I. M., Cronin, J. G., Healey, G. D., Gabler, C., Heuwieser, W., Streyl, D., Bromfield, J. J., Miyamoto, A. Fergani, C., & Dobson, H. (2014). Innate immunity and inflammation of the bo-vine female reproductive tract in health and disease. Reproduction, 148(3), 41–51.

Smoczyński, M. (2017). Role of phospholipid flux during milk secretion in the mammary gland. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia, 22(2), 117–129.

Van Hoeij, R. J., Dijkstra, J., Bruckmaier, R. M., Gross, J. J., Lam, T. J. G. M., Remmelink, G. J., Kemp, B., & van Knegsel, A. T. M. (2017). The effect of dry period length and postpartum level of concentrate on milk production, energy balance, and plasma metabolites of dairy cows across the dry period and in early lactation. Journal of Dairy Science, 100(7), 5863–5879.

Zamaziy, A., Кambur, M., Кolechko, A., Lermontov, A., & Butov, O. (2018). Employment biologically active preparation “Surfakta ZKF” in prophylactic hypoxia fetus and treatment of calves. Science and Technology Bulletin of SRC for Biosafety and Environmental Control of AIC, 5(4), 45–55.

Опубліковано
2018-11-30

##plugins.generic.recommendByAuthor.heading##