Анатомія глибокої кори лімфатичних вузлів у лабораторних тварин

Ключові слова: лімфатичні вузли; лімфоїдна паренхіма; структурно-функціональні зони; клітинні зони; лабораторні миші; кролики; мурчаки; хомяки.

Анотація

Лімфатичні вузли – це компактні лімфоїдні органи, які побудовані з лімфоцитів і тонкої ретикулярної строми. Лімфоїдна паренхіма лімфатичних вузлів розділена на окремі клітинні зони, найбільш розвиненими з яких, являються одиниці глибокої кори. У роботі досліджені лімфатичні вузли дрібних ссавців, яких часто використовують для лабораторних досліджень. Соматичні (поверхневий шийний і пахвовий) і вісцеральні (печінковий та середостінний) лімфатичні вузли відібрані від мишей (n = 5), мурчаків (n = 5), хом’яків (n = 3) і кроликів (n = 5). Використовували класичні гістологічні методи (загальна гістологічна будова органів), морфометричні (визначення відносної площі окремих структурно-функціональних зон), імуногістохімічні (розташування окремих клітинних популяцій). Показано, що глибока кора паренхіми лимфатичеких вузлів складається з окремих структур «одиниць глибокої кори»,  деякі з яких об’єднані в комплекси. Кожна одиниця це ​​округла структура, утворена лімфоцитами і ретикулярними волокнами. Розмір одиниць приблизно однаковий у всіх досліджених тварин і не залежить від розмірів їх тіла. Найбільш розвиненими одиниці глибокої кори виявлені в поверхневому шийному вузлі, а найбільші – у кроликів, де їх розмір досягав 3 мм. У всіх досліджуваних тварин одиниці глибокої кори розташовані на одному рівні, уздовж підкапсулярного синуса. Найбільш розвиненим тканинним компонентом досліджених лімфатичних вузлів є лімфоїдна паренхіма, у лабораторних мишей вона займає значно більшу площу ніж у інших видів тварин. Найменш розвиненими були центральні ділянки одиниць глибокої кори.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Ager, A. (2017). High endothelial venules and other blood vessels: critical regulators of lymphoid organ development and function. Frontiers in Immunology, 8.

Belotta, A. F., Gomes, M. C., Rocha, N. S., Melchert, A., Giuffrida, R., Silva, J. P., & Mamprim, M. J. (2019). Sonography and sonoelastography in the detection of malignancy in superficial lymph nodes of dogs. Journal of Veterinary Internal Medicine, 33(3), 1403–1413.

Butler, J., Sawtell, A., Jarrett, S., Cosgrove, J., Leigh, R., Timmis, J., & Coles, M. (2016). Imaging immunity in lymph nodes: past, present and future. Advances in Experimental Medicine and Biology, 329–346.

Brown, M., Assen, F. P., Leithner, A., Abe, J., Schachner, H., Asfour, G., Bago-Horvath, Z., Stein, J. V., Uhrin, P., Sixt, M., & Kerjaschki, D. (2018). Lymph node blood vessels provide exit routes for metastatic tumor cell dissemination in mice. Science, 359(6382), 1408–1411.

De Carvalho, P., Guerra, S., Rizzo, M., da Silva, A., Cavalcante, M., & Conde Júnior, A. (2018). Morphology of the cervical lymph nodes of agouti (Dasyprocta prymnolopha, Wagler, 1831). Journal of Morphological Sciences, 35(03), 191–193.

Gavrilin, P. N., Gavrilina, О. G., & Kravtsovа, M. V. (2017). The compartments of the parenchyma of the lymph nodes in newborn bull calves of domestic cattle (Bos taurus). Regulatory Mechanisms in Biosystems, 8(2), 169–178.

Gavrilin, P., & Gibert, І. (2016). The study of topography features and macro structure of the lymph nodes of rabbits for meat use (cross hyplus). Theoretical and Applied Veterinary Medicine, 4(4), 12–17 (in Ukrainian).

Gavrilin, P. N., Lieshchova, M. A., Gavrilina, O. G., & Boldyreva, T. F. (2018). Prenatal morphogenesis of compartments of the parenchyma of the lymph nodes of domestic cattle (Bos taurus). Regulatory Mechanisms in Biosystems, 9(1), 95–104.

Gibbings, S. L., & Jakubzick, C. V. (2018). Isolation and characterization of mononuclear phagocytes in the mouse lung and lymph nodes. Lung Innate Immunity and Inflammation, 33–44.

Kim, S. H., Oh, S. N., Choi, H. S., Lee, H. S., Jun, J., Nam, Y., Lee, S. H., Lee, J.-K., & Lee, H. G. (2016). USPIO enhanced lymph node MRI using 3D multi-echo GRE in a rabbit model. Contrast Media & Molecular Imaging, 11(6), 544–549.

Kim, W., & Katai, H. (2012). Dissection of lymph nodes around the splenic artery. Laparoscopic Gastrectomy for Cancer, 81–83.

Le, C. P., Nowell, C. J., Kim-Fuchs, C., Botteri, E., Hiller, J. G., Ismail, H., Pimentel, M. A., Chai, M. G., Karnezis, T., Rotmensz, N., Renne, G., Gandini, S., Pouton, C. W., Ferrari, D., Möller, A., Stacker, St. A., & Sloan, E. K. (2016). Chronic stress in mice remodels lymph vasculature to promote tumour cell dissemination. Nature Communications, 7(1).

Li, Y., Masse-Ranson, G., Garcia, Z., Bruel, T., Kök, A., Strick-Marchand, H., Jouvion, G., Serafini, N., Lim, A. I., Dusseaux, M., Hieu, T., Bourgade, F., Toubert, A., Finke, D., Schwartz, O., Bousso, P., Mouquet, H., & Di Santo, J. P. (2018). A human immune system mouse model with robust lymph node development. Nature Methods, 15(8), 623–630.

Platt, A. M., & Randolph, G. J. (2013). Cellular composition of lymph. Immunology of the Lymphatic System, 53–64.

Ruddle, N. H. (2016). High endothelial venules and lymphatic vessels in tertiary lymphoid organs: characteristics, functions, and regulation. Frontiers in Immunology, 7.

Sainte-Marie, G. (2010). The lymph node revisited: development, morphology, functioning, and role in triggering primary immune responses. The Anatomical Record: Advances in Integrative Anatomy and Evolutionary Biology, 293(2), 320–337.

Senthilkumar, S., Kannan, T. A., Ramesh, G., & Sumathi, D. (2019). Histological and immunohistochemical observations of supramammary lymph node in sheep and goat. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 8(08), 74–82.

Willard-Mack, C. L. (2006). Normal structure, function, and histology of lymph nodes. Toxicologic Pathology, 34(5), 409–424.

Zhu, J., Rowland, E. M., Harput, S., Riemer, K., Leow, C. H., Clark, B., Cox, K., Lim, A., Christensen-Jeffries, K., Zhang, G., Brown, J., Dunsby, C., Eckersley, R. J., Weinberg, P. D., & Tang, M.-X. (2019). 3D super-resolution US imaging of rabbit lymph node vasculature in vivo by using microbubbles. Radiology, 291(3), 642–650.

Переглядів анотації: 132
Завантажень PDF: 71
Опубліковано
2019-12-20

##plugins.generic.recommendByAuthor.heading##