Функціональні зони плямки Пейєра сліпої кишки кролів

Ключові слова: лімфоїдна тканина; лімфоїдні вузлики; гермінативні центри; мантійна зона; інтерквартильний розмах

Анотація

Особливість лімфоїдної тканини, асоційованої з кишками у кролів полягає в тому, що вона більш розвинута, ніж у інших видів тварин. У кролів до її складу входять лімфоїдний дивертикул, червоподібний відросток та плямки Пейєра. Ці імунні утворення містять організовану складову лімфоїдної тканини – лімфоїдні вузлики (В-клітинна зона) та міжвузликову зону (Т-клітинна). Внаслідок антигенної стимуляції формуються вторинні лімфоїдні вузлики з гермінативними центрами. Досліджено сліпу кишку кролів породи Хіплус 30-, 60- та 90-добового віку по п’ять особин у кожній віковій групі. Дослідні кролі клінічно здорові, не підлягали вакцинації, обробці від екто- та ендопаразитів. Для дослідження відібрані плямки Пейєра сліпої кишки, зафіксовані у 10% формаліні з подальшим виготовленням гістопрепаратів із забарвленням гематоксилін-еозином. Встановлено, що на 30-ту добу життя макроскопічно виявляли плямки Пейєра у сліпій кишці. На гістологічному рівні вони мали сформовані міжвузликовий простір та лімфоїдні вузлики. В свою чергу, лімфоїдні вузлики поділялися на первинні та вторинні. У вторинних лімфоїдних вузликах спостерігали добре виражену мантійну зону та гермінативні центри. Дослідили закономірності росту показників їх площ (середнє значення, медіана та інтерквартильний розкид) та їх кореляцію. Найбільш інтенсивний ріст показників площі мантійної зони та гермінативного центру спостерігали з 30-ї по 60-ту добу. Встановили відносну площу мантійної зони та гермінативного центру у складі вторинного лімфоїдного вузлика. Її значення протягом дослідного періоду майже не змінювалось.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Arrazuria, R., Pérez, V., Molina, E., Juste, R.A., Khafipour, E., & Elguezabal, N. Diet induced changes in the microbiota and cell composition of rabbit gut associated lymphoid tissue (GALT). Scientific Reports, 2018, 8, 1–11.

Biram, A., Strömberg, A., Winter, E., Stoler-Barak, L., Salomon, R., Addadi, Y., Dahan, R., Taari, G., Bermak, M., & Shulman, Z. (2019). BCR affinity differentially regulates colonization of the subepithelial dome and infiltration into germinal centers within Peyer’s patches. Nature Immunology, 20(4), 482–492.

Biram, A., Winter, E., Denton, A. E., Zaretsky, I., Dassa, B., Bemark, M., Linterman M.A., Yaari G., Shulman, Z. (2020). B cell diversification is uncoupled from sap-mediated selection forces in chronic germinal centers within peyer’s patches. Cell Reports, 30(6), 1910–1922.

Bonnardel, J., Da Silva, C., Henri, S., Tamoutounour, S., Chasson, L., Montañana-Sanchis, F., Gorvel, J-P., & Lelouard, H. (2015). Innate and adaptive immune functions of peyer’s patch monocyte-derived cells. Cell Reports, 11(5), 770–784.

Butler, J. E., & Sinkora, M. (2013). The enigma of the lower gut-associated lymphoid tissue (GALT). Journal of Leukocyte Biology, 94(2), 259–270.

Callahan, G. N., & Yates, R. M. (2014). Basic veterinary immunology. Boulder: University Press of Colorado.

Eberl, G. (2007). From induced to programmed lymphoid tissues: the long road to preempt pathogens. Trends in Immunology, 28(10), 423–428.

Furukawa, M., Ito, S., Suzuki, S., Fuchimoto, D., Onishi, A., Niimi, K., Usami, K., Wu, G., Bazer, F. W., Ogasawara, K., Watanabe, K., Aso, H., & Nochi, T. (2020). Organogenesis of ileal peyer’s patches is initiated prenatally and accelerated postnatally with comprehensive proliferation of b cells in pigs. Frontiers in Immunology, 11, 1–11.

Gomez de Aguero, M., Ganal-Vonarburg, S. C., Fuhrer, T., Rupp, S., Uchimura, Y., Li, H., Steinert, A., Yeikenwalder, M., Hapfelmeier, S., Sauer, U., McCoy, K. D. & Macpherson, A. J. (2016). The maternal microbiota drives early postnatal innate immune development. Science, 351(6279), 1296–1302.

Indu, V. R., Lucy, K. M., Ashok, N., & Maya, S. (2018). Prenatal development of rectal patch in large intestine of goats. Indian Journal of Animal Research, 52(2), 232–234.

Khomych, V., & Fedorenko, O. (2020). Immunohistochemical characterisation of lymphoid populations in rabbit jejunal peyer’s patch. Eureka: Life Sciences, (5), 16–20.

Marinkovic, D., & Marinkovic, T. (2020). Putative role of marginal zone B cells in pathophysiological processes. Scandinavian Journal of Immunology, 92(3), 1–12.

Mörbe, U.M., Jørgensen, P.B., Fenton, T.M., von Burg, N., Riis, L.B., Spencer, J., & Agace, W.W. (2021). Human gut-associated lymphoid tissues (GALT); diversity, structure, and function. Mucosal Immunology, 1–10.

Owen J. A., Punt J., & Stranford S. A. (2013). Kuby immunology. New York: WH Freeman.

Özaydın, T., Öznurlu, Y., Sur, E., Çelik, İ., & Uluışık, D. (2018). The effects of bisphenol A on some plasma cytokine levels and distribution of CD8+ and CD4+ T lymphocytes in spleen, ileal Peyer’s patch and bronchus associated lymphoid tissue in rats. Acta Histochemica, 120(8), 728–733.

Özbek, M., & Bayraktaroğlu, A. G. (2019). Developmental study on the ileal Peyer’s patches of sheep, and cytokeratin-18 as a possible marker for M cells in follicle associated epithelium. Acta Histochemica, 121(3), 311–322.

Palm, A.-K. E., & Kleinau, S. (2021). Marginal zone B cells: From housekeeping function to autoimmunity? Journal of Autoimmunity, 119, 102627.

Perez-Shibayama, C., Gil-Cruz, C., & Ludewig, B. (2019). Fibroblastic reticular cells at the nexus of innate and adaptive immune responses. Immunological Reviews, 289(1), 31–41.

Pikor, N. B., Mörbe, U., Lütge, M., Gil-Cruz, C., Perez-Shibayama, C., Novkovic, M., Cheng, H-W., Nombela-Arrieta, C., Nagasawa, T., Linterman, M.A., Onder L. & Ludewig, B. (2020). Remodeling of light and dark zone follicular dendritic cells governs germinal center responses. Nat Immunol 21, 649–659.

Prados, A., Onder, L., Cheng, H. W., Mörbe, U., Lütge, M., Gil-Cruz, C., Perez-Shibayama, C., Koliaraki, V., Ludewig, B. & Kollias, G. (2021). Fibroblastic reticular cell lineage convergence in Peyer’s patches governs intestinal immunity. Nature Immunology, 22(4), 510–519.

Reboldi, A., & Cyster, J. G. (2016). Peyer’s patches: organizing B-cell responses at the intestinal frontier. Immunological Reviews, 271(1), 230–245.

Smith, H. F., Parker, W., Kotzé, S. H., & Laurin, M. (2013). Multiple independent appearances of the cecal appendix in mammalian evolution and an investigation of related ecological and anatomical factors. Comptes Rendus Palevol, 12(6), 339–354.

Stebegg, M., Kumar, S. D., Silva-Cayetano, A., Fonseca, V. R., Linterman, M. A., & Graca, L. (2018). Regulation of the germinal center response. Frontiers in Immunology, 9, 1–13.

Wang, C., Huang, L., Wang, P., Liu, Q., & Wang, J. (2020). The effects of deoxynivalenol on the ultrastructure of the sacculus rotundus and vermiform appendix, as well as the intestinal microbiota of weaned rabbits. Toxins, 12(9), 1–15.

Zhai, S-K. & Lanning, D.K. (2013) Diversification of the primary antibody repertoire begins during early follicle development in the rabbit appendix. Molecular Immunology, 54, 140–147.

Zhang, L., Lu, Y., Wang, Y., Wang, F., Zhai, S., Chen, Z., & Cai, Z. (2020). PHF14 is required for germinal center B cell development. Cellular Immunology, 358, 1–7.

Zhao, Y., Uduman, M., Siu, J. H., Tull, T. J., Sanderson, J. D., Wu, Y. C. B., Zhou, J.Q., Petrov, N., Ellis, R., Todd, K., Chavele, K-M., Guesdon, W., Vossenkamper, A. Jassem, W., D’Cruz, D.P., Fear, D.J., John, S., Scheel-Toellner, D., Hopkins, C., Moreno, E., Woodman, N.L., Ciccarelli, F., Heck, S., Kleinstein, S.H., Bemark, M. & Spencer, J. (2018). Spatiotemporal segregation of human marginal zone and memory B cell populations in lymphoid tissue. Nature Communications, 9(1), 1-15.

Переглядів анотації: 19
Завантажень PDF: 18
Опубліковано
2021-05-14